試劑盒是蛋白定量的金規(guī)范，也是免疫學研討中常用的試驗辦法之一。很多人覺得ELISA很簡單，其實不然。研域(上海)帶你繞開ELISA試驗中出現(xiàn)的各種問題，輕松搞定ELISA試驗~
試驗原理
1.包被：抗原/抗體，固相化
2.反響： 1)待測抗體/抗原； 2)酶標抗原/抗體
3.洗滌：使結合在固相上的抗原抗體復合物與未結合的別離
4.底物顯色：定性/定量剖析
常用辦法
1.間接法
檢測抗體常用的辦法, 首要用于對病原體抗體的檢測。
優(yōu)勢：二抗能夠加強信號，并且有多種挑選能做不同的測定剖析。不加酶符號的一級抗體則能保留它多的免疫反響性。
缺陷：交互反響發(fā)生的機率較高
2.雙抗體夾心法
檢測大分子抗原常用的辦法。
優(yōu)勢：高活絡、高專一性，抗原無須事前純化。
缺陷：抗原必定得具有兩個以上的抗體結合部位。
3.競爭法
檢測小分子半抗原（藥物、激素等）。
優(yōu)勢：可適用比較不純的樣本，并且數(shù)據(jù)再現(xiàn)性很高。
缺陷：全體的敏感性和專一性都較差。

不同試劑盒中的組分能否通用
除非是共用的試劑如洗液、檢測緩沖液，其它組分不主張用其它試劑盒的組分，乃至是同一目標不同批次的試劑盒里的組分。這些組分(包含規(guī)范品、規(guī)范品稀釋液、檢測抗體、酶等)都是通過優(yōu)化的，假如輕率運用其它試劑盒的組分，有可能對成果產生影響。
樣本經不同梯度稀釋，核算得到的樣本值差異較大
有時候咱們不清楚樣本中意圖蛋白的濃度怎么，應該怎么稀釋，那么咱們就會做下預試驗，斷定稀釋倍數(shù)。但是有時候同一樣本做了幾個不同梯度稀釋后，核算得到的樣本值之間差異較大，應該挑選哪一個稀釋倍數(shù)呢？
這兒觸及到了基質效應。一般血清樣本加樣量較高時，血清中的各種蛋白會抑制抗原抗體的接觸，基質效應較顯著。而通過稀釋后，攪擾要素也隨之稀釋，影響就會較小。當某兩個梯度稀釋后，核算得到的樣本值挨近時，咱們就能夠以為在該稀釋梯度時，樣本中的攪擾要素影響較小，核算得到的值也是挨近真實的。但是這樣的稀釋是針對意圖蛋白濃度較高的樣本而言。關于濃度很低的樣本，通過多倍稀釋后，就愈加測不到了，此時可按照廠家說明書引薦的加樣方法操作。